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BCA法及Bradford法測定蛋白濃度的區別

嘉峪檢測網        2018-12-04 17:22

蛋白定量最常用的兩種方法BCA法、Bradford(考馬斯亮藍)法。

 

現將其原理與實驗選擇中略微差別簡介如下

 

原理

 

BCA法原理:堿性條件下,蛋白將Cu2+還原為Cu+, Cu+與BCA試劑形成紫顏色的絡合物,吸光強度與蛋白濃度成正比。測定其在562nm處的吸收值,并與標準曲線對比,即可計算待測蛋白的濃度。

 

Bradford法原理:考馬斯亮藍在酸性游離狀態下呈棕紅色,最大光吸收在465nm,當它與蛋白質結合后變為藍色,最大光吸收在595nm。在一定的濃度范圍內,蛋白質-染料復合物在波長為595nm處的光吸收與蛋白質含量成正比,通過測定595nm處光吸收的增加量可知與其結合蛋白質的量。蛋白質和考馬斯亮藍結合,在2-5min左右的時間內達到平衡,完成反應十分迅速,其結合物在室溫下1小時內保持穩定。

 

選擇區別

 

BCA法:該方法可以兼容樣品中高達5%的SDS,5%的Triton X-100,5%的Tween 20、60、80。但該方法受螯合劑和略高濃度的還原劑的影響,需確保EDTA低于10mM,無EGTA,二硫蘇糖醇(DTT)低于1mM,β-巰基乙醇(β-Mercaptoethanol)低于0.01%。

 

Bradford法:該方法樣品中β-巰基乙醇(β-Mercaptoethanol)的濃度可高達1M,二硫蘇糖醇(DTT)的濃度可高達5mM。但該方法受略高濃度的去垢劑影響,需確保SDS低于0.01%,Triton X-100低于0.05%,Tween 20、60、80低于0.015%。

 

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來源:AnyTesting

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