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免疫原性臨床前DMPK生物分析策略

嘉峪檢測網(wǎng)        2024-11-13 09:56

前言

 

免疫原性一般是指藥物和/或其代謝物誘發(fā)對自身或相關(guān)蛋白的免疫應(yīng)答或免疫相關(guān)事件的能力[1]。免疫反應(yīng)的影響可以是無臨床意義抗藥抗體的出現(xiàn),也可以嚴(yán)重到危及生命。免疫原性研究一直是藥物研發(fā)的重要組成部分,貫穿藥物研發(fā)-非臨床研究-臨床研究-上市后藥物監(jiān)測的整個生命周期。抗藥抗體 (Anti-drug antibody, ADA)是藥物免疫原性評價的主要方式。目前的大分子類型藥物包括單克隆抗體(mAbs)、融合蛋白、重組蛋白、基因治療產(chǎn)品、疫苗,特別是新型疫苗(如mRNA疫苗)、細胞治療產(chǎn)品(如CAR-T細胞療法)等,都是可能引起免疫原性的新分子類型。本文將從免疫原性的形成機制和影響因素、對藥物研發(fā)產(chǎn)生的影響出發(fā),介紹常用的檢測免疫原性的策略、如何選取合適的分析平臺和檢測形式以及分析方法面臨的挑戰(zhàn)。

 

1、抗藥抗體的形成機制

 

治療性蛋白藥物引起的機體免疫反應(yīng)包括天然免疫和適應(yīng)性免疫。天然免疫是生物體非特異性、無記憶性的病原體防御功能,用以抵御病原體入侵的第一道防線,特定的藥物類型在特殊病人群體也可能誘導(dǎo)天然免疫系統(tǒng)的響應(yīng)。而我們一般討論與監(jiān)測的更多是治療性蛋白藥物的適應(yīng)性免疫反應(yīng)。適應(yīng)性免疫包括細胞免疫介導(dǎo)的細胞因子釋放作用和體液免疫介導(dǎo)的抗藥抗體的產(chǎn)生。

 

體液免疫主要通過B細胞產(chǎn)生的針對治療性蛋白的抗藥抗體來發(fā)揮作用。抗藥抗體不僅包括結(jié)合藥物的抗體,也可以是阻斷其功能的中和抗體。如圖1所示,根據(jù)產(chǎn)生機制通常可分為T細胞依賴途徑和非T細胞依賴兩種機制。實際上,由于免疫復(fù)合物或者聚集物都能夠從不同程度上激活這兩種途徑,并且兩種途徑均會產(chǎn)生ADA,使得這兩種機制并無明顯區(qū)別,它們會相互作用并增加對方的作用強度。

 

圖1. 抗藥抗體的產(chǎn)生機制[2]

 

2、免疫原性產(chǎn)生因素及對藥物研發(fā)的影響

 

ADA的產(chǎn)生最初與第一批上市抗體含有大量的小鼠序列有關(guān)。它們被人體免疫系統(tǒng)識別為異物是免疫原性出現(xiàn)的關(guān)鍵步驟。為了解決該問題,生物工程的進步產(chǎn)生了嵌合(鼠-人)抗體、人源化抗體和全人源抗體[3]。然而,盡管免疫原性降低,但并沒有完全消除。免疫原性的產(chǎn)生是由多因素共同作用的結(jié)果,可以分為與患者相關(guān)的因素(患者的免疫力狀態(tài)和免疫能力、遺傳因素、預(yù)存抗體、給藥途徑、劑量和頻率)和與藥物相關(guān)的因素(產(chǎn)品的來源、結(jié)構(gòu)、聚合物的形成、糖基化、聚乙二醇化、雜質(zhì)、處方、包裝和儲存等)。美國藥典通則1106對這些影響因素進行整理歸納,主要可以分為低、中、高風(fēng)險3個方面。

 

表1. 影響免疫原性產(chǎn)生的因素[4]

ADA 會對藥物暴露、藥物代謝動力學(xué)特征、藥效、藥物毒性作用等造成影響。ADA與藥物結(jié)合,可能會增加或減少藥物的清除、影響半衰期和組織分布、改變藥物的暴露水平和藥代動力學(xué)特征、影響對藥物毒性作用的評價及對臨床研究中起始劑量的評估;中和抗體會中和藥物的活性、降低藥物的藥效作用;ADA與藥物及相似內(nèi)源性蛋白(具備相似表位)結(jié)合后,可能會導(dǎo)致該蛋白缺陷綜合征,引起相應(yīng)毒性作用;對藥物的免疫應(yīng)答可能會導(dǎo)致過敏反應(yīng)、自身免疫等,ADA-藥物免疫復(fù)合物沉積可能引起免疫病理變化和相關(guān)不良反應(yīng)[5]。

 

3、免疫原性檢測策略

 

對于ADA的檢測,NMPA、FDA、EMA的指導(dǎo)原則均從免疫原性的檢測流程維度分為篩選、確證和表征3個階段。如圖2所示,首先對所有樣品進行篩選試驗,其次對陽性樣品的特異性進行確證試驗,對已確定的陽性樣品進行滴度試驗,以及通過功能性試驗對抗體中和活性進行檢測。其中在已確定的陽性樣品中,還應(yīng)考慮確定抗體同種型、亞型和結(jié)合表位的檢測。3個指導(dǎo)原則對于方法學(xué)驗證的參數(shù)基本相同,但NMPA和FDA的指導(dǎo)原則給出了更加具體的要求和做法,而EMA相對寬泛。ADA檢測的方法學(xué)驗證內(nèi)容通常包括篩選臨界值、確證臨界值、分析方法靈敏度、精密度、選擇性、藥物耐受性、特異性、穩(wěn)健性、重現(xiàn)性及穩(wěn)定性等,表2總結(jié)了3種指導(dǎo)原則需要的驗證參數(shù)。

 

圖2. ADA檢測的分級評估策略[1]

 

表2. 3種指導(dǎo)原則驗證參數(shù)的比較匯總[6-8]

注:+:有相關(guān)參數(shù) -:無提及

 

對于細胞因子釋放試驗,EMA并未要求,F(xiàn)DA也僅是簡單提及,而NMPA首次將體外細胞因子試驗提到法規(guī)層面,對體外細胞因子試驗的策略、基本觀察指標(biāo)做了要求:基于細胞因子釋放機制,設(shè)計合適的體外細胞因子釋放試驗,如果藥物直接靶向免疫細胞,可采用外周血單個核細胞進行試驗,如果機制可能與FcγRs結(jié)合相關(guān),則更適合在包含表達FcγRs細胞的全血中進行試驗,觀察指標(biāo)包括但不限于IL-2、IL-6、IL-10、IFN-γ和TNF-α[1][6][7][8]。

 

4、檢測平臺和檢測形式的選擇

 

由于免疫原性會嚴(yán)重影響藥物的有效性和安全性,藥監(jiān)部門要求所有治療性蛋白藥物都要進行免疫原性檢測,F(xiàn)DA對其給出的具體要求是高靈敏度、高特異性、高穩(wěn)定性及高親和力。而ADA的檢測和確認比較復(fù)雜,檢測結(jié)果會受到所使用的分析方法的影響。包括酶聯(lián)免疫法(ELISA)、電化學(xué)發(fā)光法(ECL)、放射免疫沉淀法(RIPA)和表面等離子體共振法(SPR)。根據(jù)表3所列出的各平臺分析方法的優(yōu)缺點,可以挑選出合適的分析平臺,規(guī)避可能出現(xiàn)的問題。

 

表3. 各免疫原性分析平臺優(yōu)缺點對比

另外,F(xiàn)DA在2018年統(tǒng)計了當(dāng)時近五年的申報方法,其中ADA的檢測以ECL和ELISA平臺為主,中和抗體檢測以細胞實驗和競爭配體結(jié)合實驗平臺為主。在檢測形式上又分為直接法和橋接法。

 

圖3. ELISA直接法示意圖

 

圖4. ECL橋接法示意圖

 

案例分享

 

在內(nèi)部驗證試驗中,采用ECL橋接法檢測了曲妥珠單抗給藥后大鼠體內(nèi)產(chǎn)生的抗藥抗體。該方法對篩選臨界值、確證臨界值、分析方法靈敏度、耐藥性、精密度、選擇性、穩(wěn)定性等參數(shù)進行了確證。其中靈敏度可做到0.382 ng/mL,耐藥性可做到陽性對照為500 ng/mL時可耐受200 μg/mL。

 

實驗入組共6只大鼠,采用交叉取點的方式,采集了8個時間點,共24個樣本。首先通過篩選試驗確認了8個樣本為陽性,再通過確證實驗確定4個樣本為假陽性,最后通過titer實驗來表征抗體的相對含量,結(jié)果顯示這4個樣本滴度從10200-68000不等。

 

表4. 曲妥珠單抗給藥后大鼠體內(nèi)試驗結(jié)果匯總

 

注:/:未進行該實驗

 

5、免疫原性分析方法的挑戰(zhàn)

 

作為評估方法學(xué)性能的關(guān)鍵試劑,陽性對照抗體直接影響檢測方法的靈敏度和藥物耐受水平。選擇合適的陽性對照抗體,對抗藥抗體檢測方法學(xué)的開發(fā)和驗證至關(guān)重要。一般選擇免疫動物制備多克隆抗體作為陽性對照抗體。

 

治療性蛋白藥物由于給藥劑量大、半衰期長,循環(huán)中的高濃度藥物給免疫原性的評估帶來了很大挑戰(zhàn)。ADA檢測會受到樣品基質(zhì)中藥物的干擾,過量的藥物與 ADA 結(jié)合,會造成 ADA 檢測假陰性結(jié)果。目前在ADA分析中,有多種方法可以用來提高藥物耐受性,減少或避免由于游離藥物的存在而造成的假陰性結(jié)果,防止對ADA的低估。由于ADA在樣品中會有兩種存在形式,即游離ADA和ADA-藥物復(fù)合物[9]。為了減少在ADA檢測過程中受到的各種干擾,需要對樣品進行前處理,應(yīng)該考慮每種藥物的特點、檢測目的、風(fēng)險評估、靈敏度目標(biāo)、操作難易程度及可行性等,選擇適用的分析方法。如表5所示,我們對比了不同處理方法對藥物耐受性的影響。

 

表5. 不同處理方法藥物耐受性對比

另外,對于單抗藥物,可溶性靶標(biāo)的干擾也是一個具有挑戰(zhàn)性的問題。可溶性的二聚體或多聚體藥物靶標(biāo)可以在兩個標(biāo)記藥物分子之間形成橋梁,容易導(dǎo)致ADA假陽性結(jié)果。而當(dāng)只能與其中一種抗體結(jié)合時,又會造成空間位阻,導(dǎo)致假陰性結(jié)果的產(chǎn)生。目前通常采用的解決方法是將基質(zhì)中的可溶性靶點進行清除,通常可以用靶點抑制劑(一般為相應(yīng)的抗靶點抗體)去結(jié)合靶點,可去除靶點的干擾作用,提高靶點耐受性[10]。

 

結(jié)語

 

隨著科技的進步,新的治療性蛋白藥物和治療方式必將成為醫(yī)藥產(chǎn)業(yè)的焦點,而免疫原性仍然是生物療法發(fā)展中要面對的一個重要問題。作為一種跨學(xué)科的方法,免疫原性評估需要生物分析、生物化學(xué)、免疫學(xué)、腫瘤學(xué)、藥理學(xué)等多學(xué)科的密切配合。

 

參考文獻

 

[1] 國家藥品監(jiān)督管理局藥品審評中心“藥物免疫原性研究技術(shù)指導(dǎo)原則”,2021年3月

 

[2] Ulitzka M., Carrara S. C., Grzeschik J., et al. Engineering therapeutic antibodies for patient safety: tackling the immunogenicity problem[J]. Protein Engineering Design and Selection, 2020: 33

 

[3] Singh, Surjit, et al. "Monoclonal antibodies: a review." Current clinical pharmacology 13.2 (2018): 85-99.

 

[4] <1106> Immunogenicity Assays - Design and Validation of Immunoassays to Detect Anti-Drug Antibodies

 

[5] Michael Ulitzka, Stefania Carrara, Julius Grzeschik, Henri Kornmann, Björn Hock, Harald Kolmar, Engineering therapeutic antibodies for patient safety: tackling the immunogenicity problem, Protein Engineering, Design and Selection, Volume 33, 2020, gzaa025, https://doi.org/10.1093/protein/gzaa025

 

[6] Guidance for Industry Bioanalytical Method Validation. US Department of Health and Human Services, Food and Drug Administration Center for Drug Evaluation and Research, Center for Veterinary Medicine. May 2018.

 

[7] Draft ICH Guideline M10-Bioanalytical Method Validation (EMEA/CHMP/EWP/172948/2019). March 2019

 

[8] EMA Guideline on bioanalytical method validation (EMEA/CHMP/EWP/192217/2009), adopted 21 July 2011

 

[9] Gunn GR, Sealey DC, Jamali F,Meibohm B,Ghosh S,Shankar G. From the bench to clinicalpractice:understanding the challenges and uncer?tainties in immunogenicity testing for biopharma?ceuticals[J]. Clin Exp Immunol,2016,184(2):137-146.

 

[10] 邵雪,洛文靖,王海學(xué),等.可溶性靶點分子對生物制品抗藥抗體橋連法檢測的挑戰(zhàn)和應(yīng)對策略[J].中國藥理學(xué)與毒理學(xué)雜志, 2019, 33(11):6.DOI:10.3867/j.issn.1000-3002.2019.11.011.

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來源:藥明康德DMPK

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