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嘉峪檢測網(wǎng) 2024-11-26 08:24
摘 要: 建立高效液相色譜-串聯(lián)四極桿質(zhì)譜(HPLC-MS/MS)法定量分析人參組培不定根中11種皂苷成分。樣品經(jīng)粉碎研磨,以70%甲醇水溶液為溶劑進行超聲提取,離心過濾后測定。采用C18色譜柱(100 mm×2.1 mm,1.8 μm),用水和乙腈進行梯度洗脫,流量為0.3 mL/min,柱溫為35 ℃。質(zhì)譜采用電噴霧電離源,負離子掃描,多反應監(jiān)測模式進行檢測。11種皂苷的質(zhì)量濃度在0.1~10 μg/mL(Rb1為0.2~10 μg/mL)范圍內(nèi)和響應強度線性相關(guān),相關(guān)系數(shù)均大于0.995,各皂苷的定量限為0.001~0.010 g/kg,加標回收率為90.43%~97.82%,相對標準偏差為1.93%~6.33%(n=6)。該方法操作簡單,分析時間短,靈敏度高,準確可靠,適用于人參組培不定根中多種皂苷類成分的同時測定。
關(guān)鍵詞: 高效液相色譜-串聯(lián)四極桿質(zhì)譜法; 人參組培不定根; 皂苷
藥用植物人參為五加科人參屬植物[1],現(xiàn)代研究認為,人參的主要藥理活性物質(zhì)為人參皂苷,它們不僅可以調(diào)節(jié)血壓、保護神經(jīng)系統(tǒng)、增強免疫系統(tǒng)等,還表現(xiàn)出抗腫瘤、抗衰老及抗氧化等多種活性[2?5]。然而人參生長緩慢,種植年限長,對環(huán)境條件要求嚴格,栽培技術(shù)復雜,生產(chǎn)受到很大限制。人參組培不定根是利用植物細胞的全能性,由人參外植體在培養(yǎng)基中誘導出愈傷組織,經(jīng)過增殖、定向誘導等步驟形成的不定根[6?7]。它既可實現(xiàn)人參種苗的快速繁殖,又可快速獲取人參的次生代謝產(chǎn)物,給藥用人參資源可持續(xù)利用帶來廣闊的前景,因此,對人參不定根開展皂苷活性成分的檢測是利用組織培養(yǎng)技術(shù)研究人參藥材生產(chǎn)栽培、開發(fā)利用的基礎(chǔ)和前提。
在以往的研究中,往往通過測定皂苷類成分的總量來評估人參組培不定根的品質(zhì),缺少對各個皂苷單體的含量測定。人參皂苷種類繁多,目前已發(fā)現(xiàn)單體皂苷超過60種,主要包括原人參二醇型、原人參三醇型和齊墩果酸型等[8]。在現(xiàn)行《中華人民共和國藥典》(2020版)中,對人參皂苷Rb1、Re和Rg1三種主要成分制定了限量指標[9],但還是缺少其他皂苷指標的檢測,因而無法完全實現(xiàn)人參及其培養(yǎng)體藥材的質(zhì)量控制和品質(zhì)評價等需求。高效液相色譜法(HPLC)已被廣泛用于人參皂苷的含量測定研究[10?12],高效液相色譜與高分辨質(zhì)譜的結(jié)合(如HPLC-Q/TOFMS、HPLC-Q/OrbitrapMS)已越來越多地應用于人參皂苷的定性研究和結(jié)構(gòu)鑒定[13?15]。然而,人參皂苷顯示出低波長紫外吸收特征,導致使用HPLC進行檢測時基線噪聲增加和靈敏度降低,同時分析時間過長,而基于高分辨質(zhì)譜的分析無法實現(xiàn)人參皂苷的絕對定量。上述方法在同時量化多種皂苷成分時均有明顯缺陷,不利于從整體揭示藥材的化學特征。目前,高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法(HPLC-MS/MS)是復雜基質(zhì)樣品中多種微量目標物確認和準確定量的主流方法[16?18],通過多重反應監(jiān)測模式,在不需要完全分離目標物的情況下實現(xiàn)定性定量檢測,同時大大縮短分析時間,提高檢測的靈敏度和數(shù)據(jù)質(zhì)量的穩(wěn)定性。筆者采用簡單的甲醇超聲提取處理方式,結(jié)合液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜快速、準確、專屬性強的優(yōu)勢,建立了人參組培不定根中11種皂苷的含量測定方法,為人參的育種繁殖、資源利用提供技術(shù)保障。
1、 實驗部分
1.1 主要儀器與試劑
高效液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜儀:6460型,配有AJS-ESI離子源,美國安捷倫科技有限公司。
臺式高速冷凍離心機:CF16RXII型,日本日立公司。
多用途渦旋混合器:SAS型,英國Stuart公司。
超聲波清洗器:KQ3200型,昆山超聲儀器有限公司。
氮吹儀:MFV-24型,廣州得泰儀器科技有限公司。
電子天平:Quintix型,感量為0.01 mg,德國賽多利斯公司。
人參皂苷:Rg1,質(zhì)量分數(shù)為98.5%,批號為110703-202235;Rg3,質(zhì)量分數(shù)為99.5%,批號為110804-201504;Re,質(zhì)量分數(shù)為96.0%,批號為110754-202129;Rb1,質(zhì)量分數(shù)為95.1%,批號為110704-202230;Rb2,質(zhì)量分數(shù)為93.8%,批號為111715-202104;Rb3,質(zhì)量分數(shù)為96.5%,批號為111686-202306;Rd,質(zhì)量分數(shù)為97.3%,批號為111818-202305;Rh2 (S),質(zhì)量分數(shù)為95.8%,批號為111748-202102,中國食品藥品檢定研究院。
人參皂苷:Rg2,質(zhì)量分數(shù)為92.4%,批號為C0007325;Rf,質(zhì)量分數(shù)為92.6%,批號為C0006815,曼哈格(上海)生物科技有限公司。
人參皂苷:Rc,質(zhì)量分數(shù)為99.9%,批號為FS1617362,天津阿爾塔科技有限公司。
正丁醇、三氯甲烷:分析純,國藥集團化學試劑有限公司。
乙腈、甲醇;均為質(zhì)譜級,美國賽默飛世爾科技有限公司。
人參組培不定根樣品:北京斯誕安普科技有限公司。
實驗用水為經(jīng)Milli-Q凈化系統(tǒng)過濾的超純水。
1.2 儀器工作條件
1.2.1 色譜儀
色譜柱:Water BEH C18柱(100 mm×2.1 mm,1.8 μm,美國沃特世公司);柱溫:35 ℃;進樣體積:5 μL;流動相:A相為水,B相為乙腈,流量為0.3 mL/min;梯度洗脫程序見表1。
表1 梯度洗脫程序
Tab. 1 Gradient elution conditions
1.2.2 質(zhì)譜儀
離子源:電噴霧離子源(AJS-ESI源);電離方式:負離子;毛細管電壓:4.0 kV;干燥器溫度350 ℃;干燥器流量8 L/min;霧化器壓力0.2 MPa;檢測方式:多反應監(jiān)測(MRM)模式;MRM監(jiān)測離子對參數(shù)如表2所示。
表2 11種分析物質(zhì)譜參數(shù)列表
Tab. 2 MS/MS determination parameters of 11 analytes
注:*為定量離子
1.3 標準溶液制備
單標儲備液:分別準確稱取11種皂苷標準品約10 mg (精確到0.01 mg),置于10 mL棕色容量瓶中,用甲醇溶解并定容至標線,得到質(zhì)量濃度均為1 000 μg/mL的單標儲備液,于-20 ℃保存。
混合標準儲備液:分別精密移取上述單標儲備液各1 mL至同一100 mL容量瓶中,用甲醇定容至標線,搖勻,得質(zhì)量濃度為10 μg/mL的混合標準儲備液,于-20 ℃保存。
系列混合標準工作溶液:準確移取上述混合標準儲備液適量,用甲醇逐級稀釋成質(zhì)量濃度分別為0.1、0.2、0.5、1、5、10 μg/mL 6種濃度的系列混合標準工作溶液,臨用前現(xiàn)配。
1.4 實驗方法
1.4.1 樣品處理
取人參組培不定根樣品適量,粉碎并充分混勻,過250 μm篩。準確稱取過篩后的樣品粉末0.1 g (精確至0.001 g),置于15 mL離心管中,精密加入70%(體積分數(shù),下同)甲醇水溶液5 mL,渦旋混勻1 min,在60 ℃下加熱超聲提取60 min,冷卻后稱重用70%甲醇水溶液補足重量。以3 000 r/min離心10 min后,上清液經(jīng)0.22 μm微孔濾膜過濾,必要時稀釋5倍,上機測定。
1.4.2 樣品測定
按儀器參考條件設(shè)定,將系列標準混合溶液和試樣溶液等體積進樣測定,得到相應的標準溶液的色譜峰面積,以皂苷標準溶液的質(zhì)量濃度為橫坐標,以色譜峰面積為縱坐標,繪制標準工作曲線,以保留時間和相對豐度比同時定性,外標法定量。
2、 結(jié)果與討論
2.1 樣品處理條件的選擇
2.1.1 提取溶劑的選擇
在實驗過程中,人參皂苷的提取效率是準確定量的關(guān)鍵。目前常用的提取溶劑包括甲醇、水、不同比例的甲醇水溶液和水飽和的正丁醇,其中水飽和的正丁醇也是現(xiàn)行藥典規(guī)定的標準方法[9]。筆者通過研究發(fā)現(xiàn),采用70%甲醇水溶液提取與水飽和的正丁醇提取結(jié)果基本一致,但檢測的偏差較小,可能原因是水飽和的正丁醇提取過程涉及蒸干及復溶等步驟,復雜且容易引入誤差。考慮到采用70%甲醇水溶液提取可以簡化實驗過程,降低能耗,因此選擇該溶劑作為提取溶劑。70%甲醇水溶液提取與水飽和的正丁醇提取結(jié)果見圖1。
圖1 不同溶劑提取樣品測定結(jié)果
Fig. 1 Determination results of samples extracted by different solvents
2.1.2 提取時間、溫度的選擇
在確定70%甲醇水溶液作為提取溶劑后,對影響提取效率的主要因素提取時間和提取溫度進行了進一步考察。選擇10、20、40、60、80 min 5個時間點,選擇25、40、60、80 ℃ 4個溫度條件。研究發(fā)現(xiàn),Rg1、Rg2、Rg3、Rh2、Rf 5種皂苷在40 min后即可提取完全,而其他幾種皂苷在60 min后提取較為完全,提取80 min后各種皂苷成分含量未有明顯變化,最終選擇60 min作為最佳提取時間(60 ℃條件下),結(jié)果詳見圖2。通過對4個提取溫度進行比較,隨著溫度的升高皂苷含量略有增加,60 ℃時達到峰值且結(jié)果穩(wěn)定,同時60 ℃也是人參藥材常用的干燥條件,因此選擇皂苷提取溫度為60 ℃。
圖2 不同提取時間對應的樣品測定結(jié)果(60 ℃)
Fig. 2 Determination results of samples corresponding to different extraction time (60 ℃)
2.2 色譜質(zhì)譜條件的優(yōu)化
2.2.1 色譜條件
人參皂苷大多含有由30個碳原子排列成4個環(huán)的甾烷類固醇核,是由糖和苷元相連而成的糖苷類化合物[13]。因其結(jié)構(gòu)相似,同分異構(gòu)體較多,色譜分離有一定困難。試驗比較了正、負兩種離子監(jiān)測模式采集皂苷類成分,其中負離子的響應強度較高,且更易形成準分子離子峰;比較了負離子監(jiān)測模式常用的乙腈-水、乙腈-水(含5 mmol/L甲酸銨)流動相體系,結(jié)果表明乙腈-水流動相體系的響應較高;同時細化梯度洗脫程序,以實現(xiàn)分離效果;考察了HPLC系統(tǒng)中常用的C18色譜柱Waters BEH C18柱(100 mm×2.1 mm,1.8 μm)和Waters HSS T3柱(100 mm×2.1 mm,1.8 μm),其中Waters BEH C18柱分離效果較好,理論塔板數(shù)較高,且化合物的峰形較尖銳,對于Rb2和Rb3兩種較難分離的同分異構(gòu)體能實現(xiàn)基線分離,最終色譜條件見1.2.1。11種皂苷化合物的提取離子流色譜圖見圖3。
圖3 11種皂苷混合標準溶液的提取離子流色譜圖
Fig. 3 Extraction ion chromatograms of mixed standard solutions of 11 saponins
2.2.2 質(zhì)譜條件的優(yōu)化
選擇1.0 μg/mL混合標準溶液,采用安捷倫科技有限公司自帶的Optimizer優(yōu)化軟件,通過兩通進樣方式對目標化合物進行質(zhì)譜條件的摸索,主要包括母離子的選擇、去簇電壓的優(yōu)化、碰撞能的優(yōu)化和子離子的選擇。筆者發(fā)現(xiàn),皂苷類化合物因其相對分子質(zhì)量較高,需要設(shè)置較大的去簇電壓,去簇電壓在175~200 V范圍效果較好;11種皂苷分子(M)中,除Rh2容易形成加和羧基(M+COOH)的準分子離子峰,其他化合物都易形成減氫(M-H)的準分子離子峰;通過對質(zhì)譜二級碎片裂解規(guī)律的解析,發(fā)現(xiàn)皂苷類結(jié)構(gòu)容易斷開脫水葡萄糖分子而形成一系列特征碎片離子,如人參三醇型皂苷(Rg1、Re等)容易產(chǎn)生質(zhì)荷比637、475的碎片離子,人參二醇型皂苷(Rb1、Rc等)容易產(chǎn)生質(zhì)荷比783、621的碎片離子。以Rg1的質(zhì)譜碎片為例,其典型的碎片離子為637[M-H-(glc-H2O)]-、475[M-H-2 (glc-H2O)]-、179[glc-H]-等,具體質(zhì)譜裂解規(guī)律見圖4。選擇相對分子質(zhì)量較大且響應較強的碎片離子作為離子對進行定量試驗;接著對11種皂苷化合物的碰撞能進行優(yōu)化,皂苷類化合物均需要較高的碰撞能量產(chǎn)生穩(wěn)定的碎片離子,從而實現(xiàn)儀器最優(yōu)的靈敏度。最終確定的皂苷化合物質(zhì)譜參數(shù)詳見表2。
圖4 負離子模式下Rg1的二級質(zhì)譜圖及質(zhì)譜裂解途徑
Fig. 4 MS/MS spectrum and mass fragmentation behavior of Rg1 in the negative ion mode
2.3 基質(zhì)效應的考察
液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜檢測復雜基質(zhì)樣品時,檢測結(jié)果的準確性易受基質(zhì)效應的干擾,為此考察了人參組培不定根樣品的基質(zhì)效應(ME)對皂苷類物質(zhì)的影響。稱取樣品適量(約1.0 g),以甲醇為提取溶劑,在80 ℃條件下索氏提取8 h,期間每隔2 h更換甲醇。回流后殘渣于60 ℃烘干,得空白基質(zhì)樣品,經(jīng)檢測不含皂苷類成分。按照1.4.1方法提取空白基質(zhì)樣品,平行制備基質(zhì)標準溶液和溶劑標準溶液,通過計算基質(zhì)標準曲線(校準曲線)線性方程斜率和溶劑標準曲線(標準曲線)線性方程斜率之比來評價基質(zhì)效應的程度。當ME為85%~120%時,表明基質(zhì)效應在可接受范圍內(nèi),在實際檢測中可以忽略基質(zhì)效應,反之則應考慮基質(zhì)效應對實際檢測的影響。11種皂苷成分的ME計算見表3,ME結(jié)果為87.8%~96.1%,表明人參組培不定根中基質(zhì)效應不明顯,在實際檢測中可使用標準曲線進行定量檢測。
表3 11種皂苷成分的基質(zhì)效應
Tab. 3 Matrix effect results for 11 saponins
2.4 線性范圍和檢出限
采用HPLC-MS/MS法分別測定人參皂苷系列混合標準工作溶液,以目標物的色譜峰面積為縱坐標y,以目標物的質(zhì)量濃度為橫坐標x,繪制標準曲線。11種化合物在曲線線性范圍內(nèi)線性良好,相關(guān)系數(shù)均不小于0.995。當樣品取樣量為0.1 g,定容體積5 mL,以信噪比為3和10時的進樣質(zhì)量濃度點為儀器的最低檢出含量和最低定量含量,最終計算方法的檢出限、定量限詳見表4。
表4 11種分析物的質(zhì)量分數(shù)線性范圍、線性方程、相關(guān)系數(shù)、檢出限和定量限
Tab. 4 Linear range, linear equation, correlation coefficient, LODs and LOQs of 11 analytes
2.5 樣品加標回收試驗率
取人參組培不定根樣品一批,平行稱量18份,每份稱取約0.1 g,3個濃度水平分別加入質(zhì)量濃度為10 μg/mL混合標準溶液100、400、1 000 μL,每個水平取樣6次,按該方法進行測定,結(jié)果見表5。由表5可見,11種皂苷類物質(zhì)的平均回收率為90.43%~97.82%,相對標準偏差(RSD)為1.93%~6.33%,滿足微量物質(zhì)的檢測需求。11種皂苷標準溶液的多反應監(jiān)測色譜圖詳見圖5。
表5 11種分析物的樣品加標回收試驗結(jié)果
Tab. 5 Spiked recovery results of 11 analytes samples
圖5 11種皂苷標準溶液的MRM色譜圖
Fig. 5 MRM chromatograms of 11 standard saponins solution
2.6 實際樣品測定
取北京斯誕安普科技有限公司提供的人參組培不定根樣品6批次,按照該方法進行測定,結(jié)果見表6。由表6可以看出,人參組培不定根樣品中各皂苷成分與種植人參中有明顯差別,其中Rg3和Rh2兩種成分顯著高于種植人參,其他皂苷成分略低于種植人參,各批次均未檢測到Rb3成分。表明組培技術(shù)培養(yǎng)的人參與種植人參在單體皂苷成分上有明顯不同,可通過調(diào)整培養(yǎng)液、培養(yǎng)環(huán)境等手段進一步研究組培技術(shù)在人參培養(yǎng)中的應用。
表6 人參組培不定根樣品中皂苷成分測定結(jié)果
Tab. 6 saponins results in the tissue culture roots of ginseng
3、 結(jié)語
利用液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜系統(tǒng)建立了人參組培不定根樣品中11種皂苷類成分含量的檢測方法。該方法操作簡單、分析時間短,測定結(jié)果準確,適用于人參組培不定根中多種皂苷成分的測定,為組培技術(shù)在人參藥材中的生產(chǎn)栽培、資源利用提供保障。
參考文獻:
1 侯淑麗,張晶晶,張寧,等.兩種不同品種人參HPLC指紋圖譜研究[J].特產(chǎn)研究,2021,43(1): 53.
HOU Shuli,ZHANG Jingjing,ZHANG Ning,et al. Fingerprints of two different varieties of panax ginseng established by HPLC[J]. Special Wild Economic Animal and Plant Research,2021,43(1): 53.
2 李貴明,李燕.人參皂苷藥理作用研究現(xiàn)狀[J].中國臨床藥理學雜志,2020,36(8): 1 024.
LI Guiming,LI Yan. Research status of pharmacological effects of ginsenosides[J]. The Chinese Journal of Clinical Pharmacology,2020,36(8): 1 024.
3 呂麗娜,姜麗紅.人參皂苷Rg1對心血管系統(tǒng)的藥理作用研究進展[J].現(xiàn)代中藥研究與實踐,2020,34(6): 83.
LYU Lina,JIANG Lihong. Pharmacological effects of Ginsenoside Rgl on cardiovascular system[J]. Research and Practice on Chinese Medicines,2020,34(6): 83.
4 王巍,蘇光悅,胡婉琦,等.近10年人參皂苷對心血管疾病的藥理作用研究進展[J].中草藥,2016,47(20): 3 736.
WANG Wei,SU Guangyue, HU Wanqi,et al. Research progress in pharmacological effects of ginsenoside on cardiovascular diseases in last decade[J]. Chinese Traditional and Herbal Drugs,2016,47(20): 3 736.
5 于雪妮,馮小剛,張建民,等.人參化學成分與藥理作用研究新進展[J].人參研究,2019(1): 47.
YU Xueni,F(xiàn)ENG Xiaogang,ZHANG Jianmin,et al. Research progress on chemical constituents and pharmacological effects of Panax ginseng[J]. Ginseng Research,2019(1): 47.
6 張志強.人參種質(zhì)資源收集評價及組培苗無糖培養(yǎng)技術(shù)研究[D].長春:吉林農(nóng)業(yè)大學,2023.
ZHANG Zhiqiang. Analysis and evaluation of Panax ginseng C. A. Meyer germplasm resources and study on sugar free culture technology of tissue culture Seedlings[D]. Changchun:Jilin Agricultural University,2023.
7 陳雙越.人參組培體系建立研究[D].延邊:延邊大學,2019.
CHEN Shuangyue. Study on the establishment of ginseng tissue culture system[D]. Yanbian:Yanbian University,2019.
8 林美好,劉海字,劉金平,等.人參皂苷的化學研究進展[J].人參研究,2011,23(4): 43.
LIN Meihao,LIU Haizi,LIU Jinping,et al. Progress of chemical research of ginsenosides[J]. Ginseng Research,2011,23(4): 43.
9 國家藥典委員會.中華人民共和國藥典(2020版):一部[M].北京:中國醫(yī)藥科技出版社,2020: 8.
National Pharmacopoeia Commission. Pharmacopoeia of the People's Republic of China(2020 Edition):Part I[M]. Beijing:China Medical Science and Technology Press,2020: 8.
10 張曉旭,馬雪濤,胡蒙,等.超高效液相色譜法檢測6種人參皂苷含量[J].中國食品學報,2015,15(5): 241.
ZHANG Xiaoxu,MA Xuetao,HU Meng,et al. Determination of six ginsenosides by ultrasonic extraction-ultra performance liquid chromatography[J]. Journal of Chinese Institute of Food Science and Technology,2015,15(5): 241.
11 吳曉民,趙丹,朱艷萍,等.人參皂苷分析測定方法的研究進展[J].上海中醫(yī)藥雜志,2018,52(5): 94.
WU Xiaomin,ZHAO Dan,ZHU Yanping,et al. Research progress on analytic determination methods of ginsenosides[J]. Shanghai Journal of Traditional Chinese Medicine,2018,52(5): 94.
12 KIM J,PHUNG H M,LEE S,et al. Anti-skin-aging effects of tissue-cultured mountain-grown ginseng and quantitative HPLC/ELSD analysis of major ginsenosides[J]. Journal of Natural Medicines,2022,76(4): 811.
13 王紅,崔議方,姜慧禎,等.基于UHPLC-Q-Exactive Orbitrap MS技術(shù)分析不同干燥方法對人參皂苷類成分的影響[J].中國中藥雜志,2022,47(19): 5 246.
WANG Hong,CUI Yifang,JIANG Huizhen,et al. Effects of different drying methods on ginsenosides based on UHPLC-Q-Exactive Orbitrap MS technique[J]. China Journal of Chinese Medica,2022,47(19): 5 246.
14 LI L,LUO G A,LIANG Q L,et al. Rapid qualitative and quantitative analyses of asian ginseng in adulterated American ginseng preparations by UPLC/Q-TOF-MS[J]. Journal of Pharmaceutical & Biomedical Analysis,2010,52(1): 66.
15 WU W,LU Z Y,TENG Y R,et al. Structural characterization of ginsenosides from flower buds of panax ginseng by RRLC-Q-TOF MS[J]. Journal of Chromatographic Science,2015: 1.
16 LIANG J,CHEN L,GUO Y H,et al. Simultaneous determination and analysis of major ginsenosides in wild American Ginseng grown in Tennessee[J]. Chemistry & Biodiversity,2019,16(7):e1 900 203.
17 LEE D G,LEE J S,KIM K T,et al. Analysis of major ginsenosides in various ginseng samples[J]. Journal of Applied Biological Chemistry,2019,62(1): 87.
18 CHRISTENSEN L P,JENSEN M,KIDMOSE U. Simultaneous determination of ginsenosides and polyacetylenes in American ginseng root (Panax quinquefolium L) by high-performance liquid chromatography[J]. Journal of Agriculture and Food Chemistry,2006,54(24): 8 995.
引用本文: 董喆,王玉梅,孫姍姍,等 . 高效液相色譜-串聯(lián)四極桿質(zhì)譜法測定人參組培不定根中11種皂苷成分[J]. 化學分析計量,2024,33(10): 55. (DONG Zhe, WANG Yumei, SUN Shanshan, et al. Determination of 11 saponins in adventitious roots of ginseng tissue cultures by high performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry[J]. Chemical Analysis and Meterage, 2024, 33(10): 55.)
來源:化學分析計量